International Tables for Crystallography (2006). Vol. C. ch. 3.4, pp. 162-170
https://doi.org/10.1107/97809553602060000588

Chapter 3.4. Mounting and setting of specimens for X-ray crystallographic studies

Chapter index

Absorption corrections 3.4.2.7
Absorption
minimization by suitable mounting of single crystals 3.4.1.3.1, 3.4.1.3.1
Adhesives for mounting specimens 3.4.1.3.1, 3.4.1.2
Area-detector diffractometry 3.4.2.6, 3.4.2.8
Capillary tubes for mounting specimens 3.4.1.2.1, 3.4.1.2.1, 3.4.1.2.1, 3.4.1.2.1, 3.4.1.2.1, 3.4.1.2.1, 3.4.1.2.1
Cell dimensions
incorrect assignment 3.4.2.1
Cellulose film containers 3.4.1.1
Cryoprotectants 3.4.1.5.2
Crystal(s)
mosaicity 3.4.1.5.3, 3.4.2.1, 3.4.2.6
slippage within capillary 3.4.1.4
Crystal-lattice vector and crystal setting 3.4.2.1, 3.4.2.1, 3.4.2.4
Debye–Scherrer camera 3.4.1.2.1, 3.4.1.2.1
Diffractometers
area-detector 3.4.2.6, 3.4.2.8
four-circle 3.4.2.6, 3.4.2.7
three-circle 3.4.2.7
Double-oscillation method 3.4.2.3
Free-radical scavengers to improve crystal lifetime 3.4.1.5.1
Gelatine capsules 3.4.1.1
Guinier camera 3.4.1.2.1
Mica containers 3.4.1.1
Morphology
mounting single crystals 3.4.1.3.1
Mounting of specimens 3.4.1
biological macromolecule single crystals 3.4.1.4
polycrystalline specimens 3.4.1.2
single crystals 3.4.1.2
Particle size 3.4.1.2.1
Precession geometry
setting 3.4.2.1, 3.4.2.4
Preferred orientation 3.4.1.2.1
Radiation damage 3.4.1.5.1
Reciprocal lattice
layer lines and crystal setting 3.4.2.3, 3.4.2.3
Screenless rotation technique for large-molecule data collection 3.4.2.6
Setting
azimuthal 3.4.2.1
precession geometry 3.4.2.1, 3.4.2.4
rotation geometry 3.4.2.1, 3.4.2.1
stationary crystal 3.4.2.1, 3.4.2.5
Specimen
mounting 3.4.1
Stationary-crystal method 3.4.2.1, 3.4.2.5
Still photographs for initial crystal setting 3.4.2.5.2, 3.4.2.6
Weissenberg camera, setting of single crystals 3.4.2.2, 3.4.2.3
White radiation
streaks and crystal setting 3.4.2.4